Fotografías de Cypripedium japonicum

Fotografías de Cypripedium japonicum

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Dos Cypripediums hermanos de Asia, C. japonicum y C. formosanum

Dos muy hermosas Cipripedios granizo del este de Asia - C. japonicum y C. formosanum - y son los únicos miembros del género de la sección Flabellinervia. Considerado por la mayoría de los taxonomistas como distinto, C. formosanum está tan estrechamente relacionado con C. japonicum que algunos creen que es una variedad de su primo mayor. Son diferentes en lo que respecta a la estatura, el color y la forma de las flores y, lo que es más importante, la facilidad de cultivo. Habiendo cultivado estas plantas durante los últimos 7 años, tengo experiencia en sus necesidades y tolerancias en el jardín. Echemos un vistazo a C. formosanum primero.

C. formosanum es endémico de las elevaciones más altas de las montañas centrales de Taiwán, donde se ha vuelto muy raro debido a la presión acumulada. Afortunadamente, es una especie bastante fácil de cultivar en el jardín y un tumulto natural. Debido a su rango restringido, lo más probable es que sea una población reliquia y se derive de la población más extendida C. japonicum. A pesar de que su distribución se extiende a ambos lados del Trópico de Cáncer, de hecho es una planta templada dado que crece solo a gran altura en su área de distribución nativa (2000-3000 metros).

Cypripedium formosanum es una de las especies de Cyp más bonitas.

Esta especie es una hierba terrestre de hoja caduca. Sus dos hojas anchas y plisadas en forma de abanico crecen opuestas entre sí en el centro de un tallo ligeramente pubescente, y miden hasta 15 cm de ancho cada una. El tallo continúa para sostener una flor y su bráctea floral con una altura total que varía entre 14-25 cm. La flor tiene un labio inflado con un orificio ovalado, casi con púas en su frente. Las flores en forma de zapatilla tienen un color base rosado en todas partes con manchas y moteados de color rosa púrpura más oscuro. Estos forman estrías dentro del orificio del labio y también están más concentrados en la base de los pétalos y el sépalo dorsal. Los pétalos son bastante anchos y el labio tiene un aspecto inflado e hinchado. El estaminodo (una estructura en forma de escudo que cubre y se une a la columna) es de un color púrpura rojizo intenso. Existen formas blancas puras y son tan raras como los dientes de gallina.

Cypripedium japonicum tiene sépalos y pétalos de color verde manzana brillante y un labio menos inflado que C. formosanum.

Las plantas crecen a partir de rizomas estoloníferos largos con nuevos crecimientos de hasta 10 cm aproximadamente del crecimiento del año anterior (esta sección del rizoma se llama entrenudo). En la base de cada crecimiento en el punto de unión al rizoma (el nodo) hay un grupo de raíces cortas sin ramas (10-20 cm de largo). Los rizomas en sí mismos a menudo se ramifican y, con el tiempo, las plantas pueden formar grandes colonias continuas en áreas amplias.

Comencé a cultivar esta planta hace unos 7 años, primero en macetas y luego en el jardín. Si bien las plantas cultivadas en macetas se mantienen bastante saludables, florecen mal y no multiplican los crecimientos. En comparación, una planta con un solo tallo que no florece se colocó en un lecho elevado y ha crecido a 10 brotes y 9 flores en solo 5 años. El problema para las plantas cultivadas en macetas parece ser las raíces calientes durante la temporada de crecimiento. Las macetas pueden calentarse en verano incluso en climas templados, pero en el calor del verano subtropical del sur de Japón el efecto es más pronunciado. Aún así, las plantas cultivadas en macetas han persistido a lo largo de los años y eso habla de la capacidad de esta especie para resistir condiciones más allá de lo que la mayoría Cipripedios puede soportar.

Este lecho de ambas especies está en su tercer año. Las plantas miran en la dirección de la luz.

C. japoncium es una especie de gran alcance que se encuentra en una gran área en el centro de China, la península de Corea y en todas las islas continentales de Japón. Curiosamente, está completamente ausente en Taiwán. Aún bastante común en partes de su rango, se está volviendo cada vez más raro por la acumulación de presión. Esta especie en particular ha sido difícil de cultivar a partir de semillas, por lo que prácticamente todas las plantas que se cultivan son recolectadas de manera silvestre o divisiones de plantas silvestres. La germinación in vitro ha sido irregular en el mejor de los casos, con las vainas verdes dando los mejores rendimientos. Como C. formosanum, es una especie de clima templado, pero puede soportar las condiciones cálidas del verano y prosperar.

Estos Cypripedium formosanum cultivados en macetas están en su séptimo año y son mucho menos vigorosos que los cultivados en el suelo.

La planta en sí es muy similar a C. formosanum, pero es más grande en todos los aspectos. Los ejemplares grandes suelen tener la mitad del tamaño de su vecino del sur, y algunos llegan a medir casi 50 cm de altura. El tallo también es más grueso y pubescente. De manera similar, la longitud de los entrenudos en el rizoma es mayor, con hasta 20 cm entre crecimientos. La flor es de tamaño similar, pero diferente en color y forma. El labio tiene un color base rosado en general, pero generalmente no tan rosa pastel como C. formosanum, y está impregnado de estrías y manchas de color rojo púrpura, particularmente alrededor del orificio del labio que está orientado hacia el frente (como en C. formosanum). Los especímenes chinos tienden a tener un color más rojo púrpura que las plantas japonesas.

La forma del labio es un poco más alargada y tiene prominentes "cuernos" alrededor de su orificio. Los sépalos y pétalos tienen un agradable color verde manzana claro con algunas motas violáceas en la base y pelos de color verde claro. Las formas de alba existen y son exquisitas además de caras. Una división del tamaño de la floración le costará entre $ 700 y $ 1000 incluso aquí en Japón. La planta es más robusta que C. formosanum, puede formar colonias aún más grandes con miles de tallos florales representados en un solo sitio.

Las grandes hojas plisadas de Cypripedium japonicum son hermosas en sí mismas.

He crecido C. japonicum desde hace cinco años y ha tenido suerte mezclada. Tienden a no hacerlo muy bien un año después del trasplante, luego recuperan fuerza en la segunda temporada y comienzan a acelerar la tercera. Este año (2011) hay 24 tallos en total con un total de 10 yemas - 3 fueron tomadas antes de abrir porque eran plantas nuevas, 1 yema abortada y 6 florecidas. El año que viene debería haber una cosecha mayor. ¡He tenido que ser paciente con estas bellezas!

Un problema importante con C. japonicum está obteniendo divisiones con al menos un entrenudo completo, es decir, el nuevo brote de crecimiento para el próximo año y sus raíces así como el nodo más viejo con su crecimiento terminado de esa temporada y sus raíces (que aún deberían estar sanas). Si obtiene una división con solo el nuevo brote de crecimiento y las raíces, probablemente no funcionará bien e incluso puede morir.

El patrón de Cypripedium japoncium muestra el crecimiento de esta temporada (derecha), el entrenudo largo entre los crecimientos y el brote de crecimiento del próximo año (izquierda) y las raíces. Tal división se trasplantará bien.

Cultivo ambas especies en una cama elevada al borde de un bosque. La base del lecho es suelo nativo (una marga volcánica pegajosa), mientras que la mitad superior es una mezcla de suelo nativo, kanuma y madera y hojas compostadas. Sobre esto hay una capa de piedra pómez de 1 cm de espesor para evitar la pudrición de las hojas cuando llegan las lluvias monzónicas en junio. A ninguno de los dos le gusta el sol, pero el sol de la mañana está bien antes de que llegue el calor del día. Pueden resistir e incluso florecer en sombra profunda, a diferencia de la mayoría de los demás. Cipripedios, sin embargo, el tono brillante es óptimo.

Afortunadamente, ninguno de los dos requiere un invierno largo y frío para vernalizarse bien. Todo lo que se necesita son 3 meses por debajo de 10 C (50F). Asimismo, aunque no lo prefieran, ambos pueden soportar temperaturas muy calurosas en verano. El verano de 2010 fue el más caluroso registrado en mi área con una temperatura promedio de 30,4 C (86,7 F) para el mes de agosto; lo lograron sin problemas. Una cosa: como a todos los Cyps, no les gustan las raíces calientes, por lo que en climas cálidos cultivarlas en macetas es una mala idea. Cabe resaltar que C. formosanum es un poco sensible al frío, así que tenga cuidado de que estén bien cubiertos de mantillo en invierno o de ponerlos en una habitación fría libre de heladas para su descanso.

Aquí hay un video de ambas especies en mi jardín en el sur de Japón en la primavera de 2014:

En naturaleza C. japonicum se encuentran a menudo en áreas húmedas a húmedas con fugas en una pendiente fuerte, por lo que una aparente contradicción entre la humedad y el drenaje es de su agrado. Dada la necesidad de alta humedad de la planta, diría que cultivarlas en un pantano tipo Holman podría ser útil. Si bien ambas especies no deben secarse, C. japonicum en particular, odia las raíces secas.

La rara forma alba de Cypripedium japonicum sigue siendo buscada y cara incluso en Japón.

Otro problema es que se alimentan mucho debido a su vigoroso hábito. Fertilizo a menudo durante el crecimiento y con una dosis más fuerte que otras orquídeas zapatilla de dama. Por supuesto, es necesario enjuagar constantemente el medio de cultivo para evitar la acumulación de sal si está usando fertilizantes inorgánicos. Evito esto usando fertilizante orgánico granulado. También se podría utilizar emulsión de pescado. Otra posibilidad es aumentar la cantidad de materia orgánica que usas, pero ten cuidado, demasiada y podrías tener problemas de podredumbre.

La mayor diferencia entre los dos, además de la apariencia, es su facilidad de cultura. Manos abajo, C. formosanum es más fácil e incluso puede soportar una buena cantidad de abuso antes de morir por completo. C. japonicum es la hermana mayor y malcriada, sin duda. Es importante tener en cuenta que C. formosanum es menos resistente al frío, lo que no es sorprendente dado que vive en el borde mismo de los trópicos (aunque a gran altura). Si se cultiva en invernadero, puede permanecer verde desde finales de febrero hasta principios de diciembre. C. japonicum crece bien en Hokkaido, donde los inviernos son mucho más severos, pero también puede permanecer verde desde abril hasta mediados de noviembre. En general C. formosanum es una planta USDA zona de resistencia al frío 6b-8a mientras C. japonicum crecerá de la zona 5a-8a. Sin embargo, probablemente la zona 7 sea la mejor para ambas especies, al menos en el este de EE. UU. Donde prevalecen los veranos más fríos y el descanso invernal es adecuado, la zona 9 también está bien (como la costa de California).

Si bien ambos son encantadores, te recomiendo que comiences con C. formosanum primero. De hecho, es realmente un buen Cyp para empezar, punto. C. japonicum es un desafío mayor, por lo que probaría algunas de las especies más fáciles antes de abordar esta.

Este grupo de Cypripedium formosanum comenzó como un solo crecimiento sin flores hace solo 5 años.


Resumen

Evaluar la efectividad del trasplante basado en la conservación de la orquídea en peligro de extinción (Cypripedium japonicum), comparamos la morfología, la fisiología, el cambio en el recuento de tallos y la viabilidad de la población de las poblaciones naturales frente a las trasplantadas sometidas a gestión del hábitat (eliminación repetida de la vegetación del sotobosque competidor) entre 2009 y 2015 en Corea del Sur. El sitio restaurado tenía luz transmitida y humedad del suelo más bajas que el sitio natural. Las poblaciones naturales y trasplantadas difirieron en la morfología foliar y el contenido total de clorofila (natural: 1,00 ± 0,04, restaurada: 0,53 ± 0,06). No se produjo ningún reclutamiento durante el período de seguimiento. La viabilidad de la población tendió a disminuir en la población restaurada (λGRAMO. = 0.97, μ = −0.05, σ 2 = 0.036) y aumento de la población natural (λGRAMO. = 1.07, μ = 0.03, σ 2 = 0,075). La eliminación repetida de la vegetación del sotobosque en competencia tuvo diferentes efectos sobre los rasgos de las hojas, la abundancia y las propiedades reproductivas de las orquídeas en peligro de extinción en ambas poblaciones. En particular, el manejo del hábitat aumentó el recuento de tallos y la tasa de floración en C. japonicum pero no aumentó la tasa de cuajado. Por lo tanto, a pesar de los repetidos esfuerzos de gestión del hábitat (eliminación de la vegetación del sotobosque competidora), llegamos a la conclusión de que la viabilidad poblacional de las poblaciones trasplantadas de orquídeas en peligro C. japonicum tenía una viabilidad deficiente a largo plazo en comparación con las poblaciones naturales, una diferencia que se atribuye principalmente a la selección inadecuada del lugar de trasplante.

Implicaciones para la Practica

  • La ecología de la especie y las condiciones del sitio receptor deben considerarse en el trasplante basado en la conservación de orquídeas zapatilla de dama en peligro de extinción.
  • En comparación con el asentamiento exitoso de plántulas, el recuento de tallos, los rasgos de las hojas y la capacidad fotosintética son mejores indicadores de los efectos de restauración a corto plazo en las orquídeas que se reproducen asexualmente.
  • La eliminación repetida de la vegetación del sotobosque hizo que las flores de las zapatillas de dama se empaquetaran densamente, lo que afectó negativamente el desarrollo de la fruta en las poblaciones en crecimiento natural.
  • Trasplantar el exceso de propagadores vegetativos después del manejo del hábitat a lugares que se asemejen a sus hábitats naturales podría reducir la densidad de floración y diversificar los tiempos de floración, mejorando así el cuajado y la reproducción de los frutos.


Resultados

Microsporogénesis y microgametogénesis

La antera es bilobulada y tetrasporangiada (Figura 1a). Antes de la maduración, la pared de la antera comprende cinco o seis capas: una epidermis, un endotecio, dos o tres capas intermedias y un tapete (Figura 1b). Desafortunadamente, debido a la falta de anteras jóvenes, no pudimos confirmar el proceso de desarrollo de la pared de las anteras. El tapete es glandular y sus células son uninucleadas durante todo el proceso de desarrollo (Figura 1b, d). Las capas intermedias se degeneran al mismo tiempo que las tétradas / poliadas de esporas dan lugar a esporas libres (Figura 1f). Mientras tanto, a la expansión radial le sigue el desarrollo de engrosamiento fibroso en las células del endotecio, y las células individuales se vuelven muy vacuoladas (figura 1f). Al mismo tiempo, los núcleos de las células del endotecio comienzan a degenerarse y este proceso se completa cuando los granos de polen alcanzan la etapa binucleada (Figura 1g, h). A medida que la antera se expande, las células epidérmicas se alargan tangencialmente y sus núcleos se degeneran, ya sea antes o después de la formación de las esporas. Tanto la epidermis como el endotecio son persistentes (Figura 1g, h). En las anteras maduras, la epidermis es papilada y se vuelve brillante y pegajosa en la superficie externa con bordes de color marrón oscuro durante la antesis (observación de campo).

Desarrollo de anteras y granos de polen en Cypripedium japonicum. a. Corte transversal (CS) de polinias jóvenes. B. CS de polinias jóvenes que muestran capas de pared. C. Citocinesis en microesporas. D. CS de pollinia mostrando pared de anteras y tétradas de microesporas. es. CS de polinias maduras con tétradas / poliadas de polen de diversas formas. F, gramo. CS de polinias maduras que muestran el desarrollo de engrosamientos de la pared en el endotecio y dehiscencia de la antera. h. Pared de la antera madura con epidermis papilada y engrosamientos fibrosos en el endotecio. la. Dos granos de polen maduros nucleados. Abreviaturas: ent, endotecio ep, epidermis gc, célula generativa ml, capa media mmc, microesporas de células madre po, pollinia pt., tubo polínico t, tapetum v, núcleo de la célula vegetativa. Barras de escala: a = 500 μm, B, D = 50 micras, c-i = 30 μm, es, F, gramo, h= 100 μm

Las células esporógenas forman una estructura en forma de arco en el lóbulo de la antera, que se diferencia en células madre de microesporas (Figura 1a, b). Las células madre de las microesporas se someten a una división meiótica, lo que da como resultado microesporas. La citocinesis en la tétrada de microesporas es siempre simultánea y la tétrada resultante es tetraédrica, isobilateral, en forma de T o lineal (figura 1c, d, e). Se produce una división mitótica desigual en la microespora, lo que da como resultado una célula generativa elipsoidal más pequeña y una célula vegetativa más grande con un núcleo redondeado, por lo que los granos de polen se binuclean durante la antesis (Fig. 1h, i). Es posible que no se produzca más división antes de la polinización, aunque algunos granos de polen desarrollan un tubo polínico dentro de la antera (Figura 1i). La dehiscencia de anteras tiene lugar a partir de una hendidura longitudinal común entre dos cámaras del mismo lóbulo (figura 1g).

Óvulo

Cada uno de los filamentos nucelares ramificados que se levantan en la cresta placentaria del ovario comprende aproximadamente de cuatro a siete células nucelares rodeadas por una sola capa de epidermis nucelar (figura 2a). La célula nucelar superior se agranda y funciona como una célula arcosporial. Mientras tanto, los tegumentos comienzan a iniciarse en el filamento nucelar. El origen de los tegumentos en el primordio del óvulo es dérmico (Fig. 2b, c). El tegumento interno se diferencia primero, se convierte en dos capas de células y finalmente forma el micropilo antes de la fertilización. El tegumento externo se diferencia un poco más tarde pero de manera similar al tegumento interno y crece más allá del tegumento interno después de la fertilización. Durante este período, los filamentos nucelares proliferan regularmente y comienzan a doblarse hacia la cresta placentaria y finalmente exhiben una condición antropópica. Por tanto, el óvulo maduro es de naturaleza tenuinucellada, bitegmica y antropópica (Fig. 2b, d).

Desarrollo de óvulo y megagametofito en Cypripedium japonicum. a. Filamento ovular joven con célula archesporial. B-C. Óvulo joven con célula madre megaspora (MMC) e inicio del tegumento (la flecha en C indica el plano de división en la célula dérmica). D. Óvulo bitegmico antropógeno. es. Primera fase de la división de meiosis en MMC. F. Dos díadas de megasporas desiguales (la flecha indica la díada de megasporas en degeneración). gramo. Diada funcional alargada de megasporas. hla. Meiosis II en díada funcional de megasporas. Abreviatura: arco, célula archesporial fc, díada funcional de megaspora ii, tegumento interno m, núcleo de díada funcional de megaspora mmc, células madre de megasporas oi, tegumento externo s, huso v, vacuola. Barras de escala: a= 500 μm, B, C, e-i= 20 μm, D= 50 micras

Megasporogénesis y megagametogénesis

La única célula arcosporial aumenta de tamaño y funciona directamente como una MMC (figura 2b). Un mayor agrandamiento de la MMC es seguido por la primera fase de división meiótica para formar dos células diada, de las cuales solo la célula chalazal es funcional (Fig. 2d-f). La célula micropilar de la díada pronto degenera, probablemente antes o justo después de la segunda división meiótica, y todo el desarrollo del saco embrionario se produce a partir de la célula chalazal de la díada. Junto con la degeneración de la célula micropilar, la célula chalazal funcional de la díada se agranda y alarga (figura 2g). La segunda división meiótica en la célula chalazal de la díada produce dos núcleos de megaesporas primarias (figura 2h). La segunda división meiótica es seguida inmediatamente por el desplazamiento de los núcleos a los polos opuestos de la célula (figura 2i). Se forma una gran vacuola durante la germinación endosporial de una megaespora funcional, lo que da como resultado el desplazamiento de los núcleos a los polos. La primera división mitótica en los núcleos micropilar primario y chalazal ocurre después del desplazamiento completo de los núcleos al polo opuesto, lo que resulta en la formación de un saco embrionario de cuatro núcleos con dos núcleos en cada polo (Figura 3a). En esta etapa, dos núcleos micropilares se someten a una segunda división mitótica para formar cuatro núcleos, pero no se observa ninguna división adicional en los dos núcleos del chalazal (figura 3b). Por tanto, el saco embrionario maduro contiene seis núcleos (figura 3c). Los cuatro núcleos micropilares forman un óvulo, dos sinérgicos y un núcleo polar, mientras que los dos núcleos chalazal forman el núcleo polar y una célula antípoda (figura 3d).

Desarrollo de megagametofito y cigoto en Cypripedium japonicum. a. Saco embrionario de cuatro núcleos formado por la primera división mitótica en el núcleo de la díada funcional. B. Núcleos micropilares después de la segunda división mitótica (línea rectangular). C-D. Saco embrionario maduro de seis núcleos. es. Tubo de polen. F. Núcleo del cigoto y del endospermo (los asteriscos en la célula central indican fusión triple). Abreviaturas: hormiga, célula antípoda, por ejemplo, óvulo en, núcleo de endospermo, núcleo de megaespora po, núcleo polar, punto, tubo polínico, sinérgico z, cigoto. Barras de escala: a-h= 20 μm

Polinización y fertilización

La antera madura mucho antes que el óvulo. La antera madura es amarilla con una superficie brillante y pegajosa en la pared exterior de la epidermis. Las flores se polinizaron a mano del 2 al 5 de mayo. La superficie pegajosa de la antera ayuda a unir la antera al estigma. Durante la polinización, los granos de polen se binuclean y el tubo polínico comienza a desarrollarse. Por el contrario, los filamentos nucelares están listos o todavía no están listos para organizar las células arcosporiales. El núcleo generativo posiblemente se divide dentro del tubo polínico, formando dos gametos masculinos. Después de la polinización, los tubos polínicos crecen a lo largo del estilo. No pudimos observar el crecimiento del tubo polínico en el canal estilar. Sin embargo, se observó una masa en expansión de tubos polínicos en los lóbulos placentarios a los 21 días después de la polinización (DAP) durante la meiosis en las MMC casi completas, y el saco embrionario entró en dos etapas nucleares. Una masa enredada de tubos polínicos permanece cerca de las células de la placenta hasta que se completa la megasporogénesis. La fertilización ocurre casi 7-8 semanas después de la polinización (WAP). La fertilización es porógama: el tubo polínico ingresa al óvulo a través del micropilo, lo que da como resultado un cigoto embrionario diploide por fusión de un gameto masculino con un huevo y un cigoto endospermático triploide después de la fusión de un gameto masculino con un núcleo polar diploide (Fig. 3e). , f). La única célula antípoda es de naturaleza efímera y se degenera poco después de la fertilización (figura 3f). El cigoto del endospermo se divide una vez y se vuelve binucleado, sin embargo, no se desarrolla más y se degenera antes de que el embrión ocupe todo el espacio.

Embriogénesis

El cigoto, el precursor de la formación de embriones, es globular (Figura 4a). La primera división del cigoto es siempre transversal, lo que da como resultado células micropilares y chalazales de igual tamaño. La división mitótica es seguida inmediatamente por un rápido alargamiento de las células micropilares, que adquieren una gran vacuola en contraste, las células del chalazal permanecen sin cambios, con un citoplasma denso (Figura 4b). Al mismo tiempo, también se produce la división en el cigoto del endospermo y el endospermo de dos núcleos existe hasta que el embrión alcanza la etapa globular (Figura 4b, d, h, i). Ambas células del embrión se dividen transversalmente, produciendo un proembrión lineal de cuatro células (Fig. 4c, d). No se observó más división en las dos células micropilares, que funcionan directamente como suspensores, mientras que las dos células chalazales, después de una serie de divisiones, producen todo el cuerpo embrionario. De las dos células del chalazal, la división transversal ocurre en la celda inferior y la división longitudinal ocurre en la celda superior, y estas cuatro eventualmente dan lugar al embrión propiamente dicho (Figura 4e, f). La serie de divisiones en ambos niveles de las células del embrión propiamente dicho da como resultado un proembrión de 10 células y luego un proembrión de 16 células (Fig. 4g, h, i). Las divisiones periclinales de la capa externa del proembrión de 16 células dan lugar al protodermo (Fig. 4j, k, l). El suspensor pasó desapercibido y estaba representado por dos celdas. La división mitótica normal ocurre en el suspensor, formando inicialmente dos células que carecen de cualquier modificación o desarrollo especial y que funcionan directamente como suspensor. También se observó poliembrionía, aunque su frecuencia fue bastante baja (Fig. 5a-c).

Desarrollo del embrión en Cypripedium japonicum. a. Desarrollo de proembriones. B. Primera división en la célula proembrionaria seguida de elongación de la célula micropilar formando un tamaño desigual de dos células embrionarias. C. Segunda división transversal en la célula chalazal formando un proembrión de tres células (dos chalazal y un micropilar). D. Tercera división en la célula del chalazal formando un proembrión lineal de cuatro células. es. Proembrión lineal de cinco células (la célula micropilar se divide en esta etapa formando un suspensor de dos células). F. División longitudinal en la célula chalazal de un embrión de cinco células que muestra dos células yuxtapuestas. gramola. Proembrión que forma la etapa temprana del proembrión globular (el núcleo del endospermo se degenera completamente después de esta etapa). jk. División periclinal en la célula embrionaria (excepto dos células suspensoras basales) que forman la capa de protodermo del embrión. L. Embrión completamente desarrollado que cubre todo el espacio interior de la semilla. Abreviaturas: pem, pro-embrión pd., capa de protodermo s, suspensor sc, cubierta de la semilla. Barras de escala: hacia = 20 μm

Poliembrionía y desarrollo de la cubierta de la semilla en Cypripedium japonicum. aC. Poliembrionía en diferentes etapas. D-F. División transversal de la semilla que muestra el desarrollo de la cubierta de la semilla. gramo. Sección longitudinal de semilla madura. Abreviaturas: em, embrión ext., exotesta pems, proembriones po, núcleos polares tg, tegmen tst, cabeza. Barras de escala: a-e= 20 μm, F= 10 μm, gramo = 30 μm

Cubierta de semilla

La capsula de C. japonicum es alargada y de forma fusiforme a fusiforme. Las semillas se dispersan por cortes longitudinales en la fruta seca y madura a principios de septiembre. Las semillas maduras son marrones, diminutas, estrechamente elípticas y curvas. El rango de tamaño es de 2,5 ± 0,3 mm de largo por 0,15 ± 0,07 mm de ancho (medidas basadas en las semillas de 15 cápsulas de tres años consecutivos, cinco cápsulas cada año y al menos 100 semillas de cada cápsula). Antes de la madurez, la cubierta de la semilla tiene cuatro o cinco capas de células. La testa consta de dos o tres capas de células y el tegmen se compone de dos capas. Las células exotestales más externas son comparativamente grandes y de forma redondeada a ovalada o irregular en la sección transversal. A la exotesta le sigue una capa mesotestal y luego una capa endotestal. Ambas capas están compuestas por tipos de células similares a las exotesta, pero son de menor tamaño. Las dos capas más internas representan los tegmen, cuyas células son más pequeñas y alargadas en sección transversal (Fig. 5d - g). Durante la madurez, la exotesta se vuelve papilada, las capas restantes se degeneran y toda la cubierta de la semilla está representada por capas finas y parecidas al papel.

Calendario reproductivo

El ciclo reproductivo de C. japonicum comienza debajo del suelo. Con base en las observaciones presentadas en este estudio, un calendario reproductivo de C. japonicum fue preparado. Todas las etapas de desarrollo a lo largo del tiempo se muestran en la figura 6a, by en el archivo complementario S1. El desarrollo de anteras comienza a mediados de marzo, cuando toda la planta se encuentra debajo de la superficie del suelo. Las células esporógenas primarias funcionan directamente como células madre de polen, y este proceso ocurre desde finales de marzo hasta principios de abril. La meiosis en las células madre del polen da como resultado tétradas de polen de diversas formas a mediados de abril. Los núcleos de los granos de polen se dividen por división mitótica a fines de abril y los granos de polen están listos para la polinización a principios de mayo. En nuestra población de estudio, el período óptimo para la polinización fue del 2 al 7 de mayo. El desarrollo ovular comenzó aproximadamente 2 semanas antes de la polinización. La celda arcosporial apareció durante la tercera semana de abril y duró aproximadamente hasta mediados de mayo. La MMC se observó a los 5-7 días después de la polinización (DAP) y se prolongó hasta la última semana de mayo. La meiosis en el MMC comenzó 2 semanas después de la polinización (WAP), y la degeneración de la célula micropilar, seguida poco después de la primera división nuclear, ocurrió casi 4 semanas después de la polinización. La segunda y tercera divisiones nucleares ocurrieron 36-45 DAP. Así, en C. japonicum, el gametofito femenino madura 6-7 WAP. La fertilización se observó desde finales de junio hasta principios de julio, aproximadamente 7-8 WAP o 45-55 DAP, mientras que el cigoto comenzó a dividirse a principios de julio y se formó un proembrión lineal de dos a cuatro células aproximadamente 55-60 DAP. La división celular constante en el proembrión de cuatro células dio como resultado un embrión globular de ocho y luego de 16 células de aproximadamente 65 DAP. Dentro de 72-80 DAP, todo el interior de la semilla se llenó de embrión. Las semillas maduras se recolectaron 90 DAP.

a Calendario reproductivo de Cypripedium japonicum que representan las respectivas etapas de desarrollo. Las líneas de colores indican la duración de la etapa correspondiente. Números (1–4) que indican las semanas del mes correspondiente. B Calendario reproductivo de Cypripedium japonicum con flores y frutos de las principales etapas de desarrollo. Las líneas azules indican la duración de la etapa correspondiente. Números (1 a 4) que indican las semanas del mes correspondiente


Cypripedium 'Emil'

Artículo #: 7477

Zonas: 4a a 7b, al menos

Inactividad: Nevada

Altura: 18 "de altura

Culturas: Parte del sol a la sombra de luz

Origen: Híbrido

Tamaño de la maceta: Olla de 3,5 "(24 onzas líquidas / 0,7 L)


Fotografías de Cypripedium japonicum

Cypripedium japonicum Thunb. 1784 SECCIÓN Flabellinervia

Foto del Dr. Clark Riley y su página de Cypripedium

Nombre común The Japan Cypripedium - En Japón - Kumagae-So - En China Shan Mai Shao Lan

Tamaño de la flor 9 a 10 cm [3,6 "a 4"

Se encuentra en Japón, Taiwán y China en suelos ricos en humus en bosques y en laderas sombreadas a lo largo de barrancos de bambú a elevaciones de 1000 a 2000 metros como un terrestre de tamaño pequeño a mediano, de crecimiento frío con una erección de 4 a 6 "[10 a 15 cm ] tallo largo que lleva 2 hojas opuestas, orbiculares, plegadas y con márgenes serrulados que florecen en la primavera en una inflorescencia erecta, terminal, densamente vellosa, de 3 "[7.5 cm] de largo, con una sola flor con una bráctea frondosa, rómbica-ovada

Sinónimos Cypripedium cathayenum SS China 1930 Cypripedium japonicum var. glabrum M.Suzuki 1980

Referencias W3 Tropicos, Kew Lista de monocotiledóneas, IPNI Icones plantarum formosanarum nec non et contributiones ad floram formosana Hayata 1912 Die Orchideen Schlechter 1915 Atlas des Orchidees Cultivees Constantin 1920 drawing fide AOS Bulletin Vol 29 No 3 1960 photo fide Encyclopedia of Cultivated Orchide Hawenkes 1965 # 4 13-16 tafel 5 Rudolph Schlechter 1971 foto ok AOS Bulletin Vol 44 # 9 1975 foto fide Orchid Digest Vol 48 No 1 1984 foto fide Orquídeas nativas de China en color Singchi, Zhanhuo y Yibo 1999 foto fide Rudolf Schlechter Die Orchideen Band 1C lieferung 40 pg 2492-2564 Brieger 2000 Orquídeas nativas de Shaanxi Shaanxi Science & Technology Press 2007 photo fide AOS Bulletin Vol 77 # 7 2008 photo fide Una guía de campo para las orquídeas de China Singchi, Zhongjian, Yibo, Xiaohua y Zhanhuo 2009 photo fide Flora of China Vol 25 Zhengyi, Raven & Deyuan 2009 Flora of China Vol 25 Ilustraciones Zhengyi, Raven & Deyuan 2010 drawing fide Boletín AOS Vol 80 # 4 2011 photo fide


Cypripedium

Resumen de especies (52) Editar

Ninguna especie: (8) Editar

Cypripedium L., Sp. Pl.: 951 (1753)

  • Especie tipo: Cypripedium calceolus Carl von Linné, Sp. Pl.: 951 (1753)

Sinonimia editar

  • Calceolus Molino. , Gard. Dict. Abr. ed. 4 (1754)
  • Calceolaría Robo. ex Fabr. , Enum., Ed. 2:37 (1763), nom. ileg.
  • Esquizopedio Salisb. , Rev. Mensual 75: 81 (1814)
  • Criosanthes Raf. , Amer. Mag. & Crit. Mensual. Apocalipsis 2: 268 (1818)
  • Arietinum L.C. Beck, Bot. Norte. Estados del Medio: 352 (1833)
  • Sacodon Raf. , Fl. Tellur. 4:45 (1838)
  • Hipodema Rchb. , Deut. Bot. Herb.-Buch: 56 (1841)
  • Ciripedio Zumagl. , Fl. Pedem. 1:18 (1859)
  • Cypripedilon St.-Lag. en A.Cariot, Étude Fl., ed. 8: (1889)
  • Fissipes Pequeño, Fl. S.E. EE.UU .: 311 (1903)
  • Europa
    • Norte de Europa
      • Dinamarca, Finlandia, Gran Bretaña, Noruega, Suecia.
    • Europa central
      • Austria, Bélgica, † Checoslovaquia, Alemania, Hungría, Polonia, Suiza.
    • Sudoeste de Europa
      • Francia, España.
    • Europa sudoriental
      • Bulgaria, Grecia, Italia, Rumania, Yugoslavia.
    • Europa del Este
      • Bielorrusia, Estados bálticos, Krym, Rusia de Europa Central, Rusia de Europa del Este, Rusia de Europa del Norte, Rusia de Europa del Sur, Rusia de Europa del Noroeste, Ucrania.
  • Asia templado
    • Siberia
      • Altay, Buryatiya, Chita, Irkutsk Krasnoyarsk, Tuva, Siberia Occidental, Yakutiya.
    • Lejano Oriente ruso
      • Amur, Kamchatka, Khabarovsk, Islas Kuriles, Magadan, Primorye, Sakhalin.
    • porcelana
      • China centro-sur, Mongolia interior, Manchuria, centro-norte de China, Qinghai, sureste de China, Tíbet.
    • Mongolia
      • Mongolia.
    • Asia Oriental
      • Japón, Corea, Taiwán.
  • Asia-Tropical
    • Subcontinente indio
      • Himalaya oriental, Nepal, Pakistán, Himalaya occidental.
    • Indochina
      • Myanmar, Vietnam.
  • América del norte
    • América subártica
      • Islas Aleutianas, Alaska, Nunavut, Territorios del Noroeste, Yukon.
    • Canadá occidental
      • Alberta, British Columbia, Manitoba, Saskatchewan.
    • Eastern Canada
      • Labrador, New Brunswick, Newfoundland, Nova Scotia, Ontario, Prince Edward Isle, Québec.
    • Northwestern U.S.A.
      • Colorado, Idaho, Montana, Oregon, Washington, Wyoming.
    • North-Central U.S.A.
      • Illinois, Iowa, Kansas, Minnesota, Missouri, North Dakota, Nebraska, Oklahoma, South Dakota, Wisconsin.
    • Northeastern U.S.A.
      • Connecticut, Indiana, Maine, Massachusetts, Michigan, New Hampshire, New Jersey, New York, Ohio, Pennsylvania, Rhode Islands, Vermont, West Virginia.
    • Southwestern U.S.A.
      • Arizona, California, Utah.
    • South-Central U.S.A.
      • New Mexico, Texas.
    • Southeastern U.S.A.
      • Alabama, Arkansas, Delaware, Georgia, Kentucky, Louisiana, Maryland, Mississippi, North Carolina, South Carolina, Tennessee, Virginia, District of Columbia.
    • Mexico
      • Mexico Central, Mexico Northeast, Mexico Gulf, Mexico Northwest, Mexico Southwest, Mexico Southeast.
  • Southern America
    • Central America
      • Guatemala, Honduras.

Primary references Edit

Additional references Edit

  • Beck, L.C. 1833. Botany of the Northern and Middle States, or, A description of the plants found in the United States, north of Virginia, arranged according to the natural system, with a synopsis of the genera according to the Linnaean system— a sketch of the rudiments of botany, and a glossary of terms. 471 pp. Printed by Webster and Skinners, Albany. BHLReference page.
  • Cribb, P. 1997. The Genus Cypripedium. Portland, Oregon: Timber Press ("Botanical Magazine Monographs") Royal Botanical Gardens, Kew. ISBN 0-88192-403-2
  • Eccarius, W. 2009. Die Orchideengattung Cypripedium. Phylogenie, Taxonomie, Morphologie, Biologie, Verbreitung, Ökologie, Hybridisation. Bürgel, Germany: EchinoMedia Verlag Dr. Kerstin Ramm, 384 pp. ISBN 978-3-937107-19-6Reference page.
  • Pridgeon, A.M. , Cribb, P.J. , Chase, M.W. & Rasmussen, F.N. (eds.) 1999. Genera Orchidacearum Volume 1: General Introduction, Apostasioideae, Cypripedioideae page 114 ff., Oxford: Oxford University Press. ISBN 0-198505-13-2

Links Edit

  • 'eFloras 2009. Cypripedium in Flora of China vol. 25 Orchidaceae --> pdf Cypripedium
  • Global Biodiversity Information Facility . 2020. GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset. Taxon: Cypripedium. Accessed: 2020 Sep 2.
  • Govaerts, R.et al. 2020. Cypripedium in Kew Science Plants of the World online. The Board of Trustees of the Royal Botanic Gardens, Kew. Published on the internet. Accessed: 2020 Sep 2. Reference page.
  • Govaerts, R.et al. 2020. Cypripedium in World Checklist of Selected Plant Families. The Board of Trustees of the Royal Botanic Gardens, Kew. Published on the internet. Accessed: 2020 Sep 2. Reference page.
  • International Plant Names Index . 2020. Cypripedium. Published online. Accessed: 2 Sep 2020.
  • The Plant List 2013. Cypripedium in The Plant List Version 1.1. Published on the internet. Accessed: 2020 Sep 2.
  • Tropicos.org 2020. Cypripedium. Missouri Botanical Garden. Published on the internet. Accessed: 2020 Sep 2. ]

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